VDR

@fresz33 https://www.reef2reef.com/threads/my-slice-of-the-ocean.200699/ To: Zamieniło się w to:

@volf nic nie stoi na przeszkodzie by skala byla w sumpie a nie zagracała akwarium. Nikt nie kaze pakować jej w całości do baniaka. W sumpie łatwiej wyczyscic detrytus po prostu wyjmując ją. Łatwiej wymienić itd. Z baniaka ogólnego jak masz juz na niej korale już nie tak prosto. Tak zwana metoda berlinska nie mowi - "nasyp" skały do baniaka - tylko mowi o tym ze zywa skala jest swietnym srodkiem do osiedlania sie bakterii nitryfikacyjnych jak i denitryfikacyjnych. I, że np. potrzeba tej skaly w obiegu 10% objętości netto akwarium. Dla przykładu opis tej metody: http://www.aquariumadvice.com/forums/f11/berlin-method-of-reef-filtration-6.html When aquascaping a "Berlin method" aquarium or any reef aquarium for that matter, you should arrange the rock in a loose arrangement to allow good water flow around and through the rocks. This will prevent settling of particulate matter and waste. Another thing while we are on the topic of aquascaping, have fun with it, don't just build a wall up the back of the aquarium. P.s Pisalem "lekka" nie lekka - nie chodziło mi o kg

Jedna uwaga.... Gruzowisko jest o tyle kiepskie że po latach jest siedliskiem detrytusu. I choćby nie wiem jak kto ustawił cyrkulację to syfu tam co nie miara :-) "Lekkie" konstrukcje maja to do siebie że ten minimalizm pozwala utrzymać "sterylnosc" zbiornika. I nie trzeba szukać daleko bo na tym forum można znaleźć baniaki z lekkimi konstrukcjami i fajnym ułożeniem skały Wysłane z mojego Redmi Note 4 przy użyciu Tapatalka

Większość baniakow słodkowodnych w stylu Amano przestała istnieć po sesji foto i po konkursach [emoji4] To tak gwoli ścisłości. Ten baniak który wrzuciłes Romku w ostatnim poscie jest inspirujący ale kryjówek dla ryb tam nie wiele na pierwszy rzut oka Ta figurka kobiety straszna tandeta ale co kto lubi. Coś jak czaszka i kuferek z nurkiem w slodkowodnym.

Kalkwasser i balling do świeżego zbiornika bez korali? Po co? Może dlatego końca zakrętów nie widać. Amons żadnego Ballinga na tym etapie, a tym bardziej zabaw z wodą wapienna. P. S Ca to nie wapno to wapń

Nie wiem wśród jakich akwarystów chodzi takie przekonanie ale takie zbiorniki po sieci kraza: Czy to co wrzucił wyzej silvia: http://dwarfreef.blogspot.com Albo np. taka maczuga w Aquaelu: czy: wpisz - japan reef aquarium i poszukaj - sporo mozna fajnych znalezc...

"Chłonność" w postaci podciągania kapilarnego niebieskiej cieczy dla mnie nie jest żadnym wyznacznikiem Z pewnością tą zdolność ma dużą, nijak jednak nie przekłada się to wprost na zdolności denitryfikacyjne. Prosty test jaki można zrobić - zwykła biała gąbka, położona na tą rozlaną niebieską wodę. Wciągnie ją równie dobrze jak Siporax - czy więc nie prościej użyć gąbki ? A o ile taniej by wtedy było. Tak więc na te filmiki z podciąganiem IMHO patrzeć można tylko jako "chłyt marketindody". Choć faktycznie musi mieć tych kanalików dużo. Co do zbierania syfu - nie chodzi o syf w postaci detrytusu, tam pompka perystaltyczna podawała papu z baniaka (feed solutions) więc to nie o taki syf chodzi. Nie bardzo co miało syfić. Bardziej szedł bym w kierunku filmu bakteryjnego który zamyka dostęp do wnętrza ceramiki/szkła

No widzisz Rafał, od razu wygląda dużo lepiej Rób rób, bo z Twoją ręką będzie pewnie kolejny wypas baniak

Stani - ja kilka razy wspomniałem tutaj, że pomijam w tych moich wypowiedziach marketingowy bełkot Ale jeśli się coś porównuje to porównuje się według tego samego kryterium - czyli np. danych producenta. Siporax dla mnie to zwykłe medium filtracyjne jakie stosowano od lat w akwarystyce słodkowodnej w tzw kubełkach czyli ceramika, szkło etc. Żadna to rewolucja również jeśli chodzi o kształt. Takie tunele robił i robi choćby nasz Aquael. A i podobne media pakowałem do kubełka dawno dawno temu, jeszcze w latach 90tych. Czy Siporax działa - amoniak i azotyny rozklada na pewno Denitryfikacja - owszem również zachodzi bo to naukowo udowodniono ale czy jest ona na tyle wydajna by pozbyć się w całości NO3 z baniaka ? Patrząc na te obliczenia i eksperymenty naukowe IMHO i tak i nie Bo wszystko zalezne od tego ile tego NO3 dziennie do baniaka dostarczamy czyli jak bogata obsade mamy, ile mamy skaly itp. Pierwsza rzecz jaka się rzuca czytając tą pracę to: A maximum simultaneous nitrification/denitrification capacity of 0.61/0.83 gN/(Iitre.day) is estimated in this study. Czy to dużo czy to mało ? Siporaxu było tyle ile weszło w rure o średnicy wewnetrznej 53mm do wysokosci 200mm. Woda do poziomu 270mm. Rurki Siporaxu 15mm. Niech każdy sam wyciągnie wnioski jak to pracuje i na ile wydajnie. Drugi cytat jaki się rzuca w oczy: In both columns, clogging occurred after a period of 40-45 days. In the second set of experiments, the column was washed out. Two litres of water, introduced from the outlet of the reactor, were found necessary to unclog the 0.4 litre reactor. After washing, the column was found to return to its previous performance level within six days. Czyli jak widać dość szybko - półtora miesiąca i Siporax przestał działać a NO3 zaczynało rosnąć. Ile osób regularnie raz na miesiąc płucze Siporax ? Dwa zloze potrzebuje pare dni by zaczac znowu dzialac - wynika z tego ze najlepiej miec dwa zloza i plukac je na przemian. Nigdy nie miałem takiego złoża - ale, że mam okazję do testów to w filtrze przepływowym o wolnym przepływie mam teraz 1l Matrixa - zasypany jakiś tydzień temu - podaje VSV - obecnie 12ml na 300l wody dziennie. Zobaczymy czy będzie robić robotę bo poziomy PO4 i NO3 mam dość duże na tą chwilę. Jak na razie nie zauwazylem zbawiennego wplywu Resztę wniosków można wyciągnąć samemu.

Jakies nieaktualne fotki

Jeden ciort. No chyba, że jestes purystą i mierzysz P/PO4 do czwartego miejsca po przecinku. Nie wiem co chciał powiedzieć mój imiennik ale jak się czyta stare wątki to ludzie przy wyniku np. 0,06 zaczynali cudować, kombinować by mieć to magiczne 0,00 czym jeszcze bardziej destabilizowali baniaki i to przy niezbyt wymagającej obsadzie i przy braku jakiś większych objawów, że koralom się źle dzieje. Czyta się czasami te próby dojścia do 0,00 jak poszukiwania św Graala.

Tu nie za bardzo jest co tlumaczyc. Masz dwie elektrody, masz bialy przelacznik ktory przelacza pomiar na jedna z nich. Montujesz elektrody w miejscu gdzie chcesz mierzyć konduktywność - ja np. mierzę za membraną przed wejściem na filtr z zywica. Druga elektrode mam zamontowana za wyjsciem z filtra z zywica. Przelacznikiem na jednej elektrodzie moge sprawdzic czy membrana jest ok i na zywice nie daje np. 80ppm. A za zywica czy woda ma to slynne 000. Przycisk on/off chyba wiadomo do czego sluzy. Jak montowac elektrody ? Sa takie trójniki. Tutaj oryginalna instrukcja: http://www.bigbrandwater.com/assets/library/hmdigital/hmdigital-dm1-instructions.pdf

Mordka tak jak już to gdzieś pisałem wygląda na Blastomusse Merletti ale to jest lps i tworzy szkielet. Jak podrażnisz np dmuchajac woda z pięty to mordka nie chowa się w jakimś szkielecie? Szkielet B. merletti może wyglądac np tak jak na zdjęciu poniżej Wysłane z mojego Redmi Note 4 przy użyciu Tapatalka

@Stani http://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S0273122399004977

Bartek Ty chyba w Milowce też byłeś jak robiliśmy te pomiary. Poza katafalkiem Gardena, śnieżnej kuli te testy zapamiętałem bo obalily moja teorie, że to nie dziqla. Aż z ciekawości sprawdzę jak zakupie nowe testy do Hanki na ile będą odbiegać od Saliferta, który mam obecnie. Wysłane z mojego Redmi Note 4 przy użyciu Tapatalka

Ostatnio, czyli w sobotę widziałem wyglądająca na oryginalna instrukcje do Hanki. Po angielsku, zalaminowana. Jak byk pisało 2minuty mieszania. Wysłane z mojego Redmi Note 4 przy użyciu Tapatalka

Mam PO4 saliferta z instrukcja - 4 krople 10 sekund, proszek 30 sekund - odczyt. I tak robię z hanka. 10ml strzykawka do próbowki, C1 - dalej jak w instrukcji. Saliferta - do Hanki i pomiar bez czekania 3 minut. Miałem jeszcze jakieś saszetki reagentow Hanki z data waznosci 2016 i wyniki byly porownywalne. Mieściło się w błędzie pomiaru. Choc nie patrzę w tej chwili ile tego jest bo jest duzo za duzo. I to fest. W zasadzie nie powinienem miec zycia w baniaku. Walczę by spadlo po zniknieciu ukwiału więc wsio rawno dla mnie ile - ważne by tendencja była spadkowa. Hanka pomiedzy C1 a C2 wygasza sie w czasie dłuższym niz 2 minuty, wiec reagenty hanki spokojnie te 2 minuty mozna mieszac. Kupię swieże reagenty Hanki i porównam sobie z tym co mam na Salifercie. Test na PO4 kupiony z miesiąc temu. Data waznosci chyba 2020. Na wodzie RO mam 0,00

Mimo tych wszystkich zabiegów i opróżniania saszetki do ostatniego pyłka, wkladaniu fiolki dokładnie w takiej samej pozycji przy pomiarze C1 i C2, czyszczeniu fiolki z wszelakich śladów paluchow, płukaniu fiolki woda z akwarium przed pomiarami itd itd jeden wynik 0,08 drugi np 0,02 trzeci jeszcze inny. Ktoś pamięta taka partie reagentow w której były jakieś czarne drobinki? Wysłane z mojego Redmi Note 4 przy użyciu Tapatalka

Ta lampa to z czasow jak LEDy dopiero zaczeły się rozpychac na rynku - pamięta czasy pierwszej instrukcji Tomasza jak budować lampy LED Ten wiecznie zywy watek majacy juz z 1500 wypowiedzi zaczynajacy sie w 2011 roku Zdjecie zrobione w 2013 roku Na niczym innym sie wtedy nie budowalo jak Cree

Czy warto ? I tak i nie Ja mam, używam jej do pomiaru na reagentach Saliferta bo pokazuje mi wynik w zjadliwej formie. Pamietam jak robilem na reagentach Hanki. Cóż potrafiły cuda pokazać również. I szła kolejna saszetka by się dowiedzieć, że jest inaczej. A pamiętam też jakąś partię gdzie w ogóle był kosmos i loteria jeśli chodzi o parametry. Pamiętam zlot w Milówce jak siedliśmy z Grzesiem i jeszcze paroma osobami, kilka HI713 ta sama woda z baniaka i robiliśmy testy na reagentach od Hanki i od Saliferta - wyniki powtarzalne. Choć w domu jak robiłem pomiary to wychodził mi błąd. Na zlocie doświadczalnie ustaliliśmy, że musiałem coś spier..... Więc tez HI713 to nie jest panaceum Tyle - dla mnie Hanka jest o tyle ok, ze teraz jak wyprowadzam baniak na prosta to niebieski jest niebieski i nic wiecej nie wiem na kropelkowym a Hanka mi ladnie pokazuje czy VSV działa - bo widze tendencje spadkowa i wiem jak mam ewentualnie reagować gdyby tej tendencji nie było. Na skali kropelkowego nie widzę nic Ale jak na Salifercie było biało lub lekko niebiesko że ciężko było powiedzieć czy to już niebieskie czy jeszcze przezroczyste - to hanka stała w półce. Szkoda było baterii

Nie wiem jakie diody konkretnie kupowaliście ale z kolorowymi trzeba uwazać na max prąd. Nie zawsze dla danego typu jest taki sam. Dlatego warto zaglądać do noty katalogowej i sprawdzić parametry. Wezmy Cree XP-E - niebieskie, royal blue i white - mozna je "puscic" pradem 1A, zielone tez na 1A choć maja inna charakterystyke jesli chodzi o forward voltage. Ale jak wezmiemy juz XP-E Amber to ta dioda bedzie miala tylko 500mA max, XP-E Red-Orange i Red maja max 700mA, a He Photo Red i Far Red będą miały 1A ale znow forward voltage inne. O ile tym napieciem "forward" nie ma co się przejmować - po prostu pewne diody zaświecą wcześniej, inne zaś później. Jeśli wezmiemy diody białe max 1A i dołożymy do nich diody np. Amber 500mA to albo sfajczymy diody puszczając prąd 1A albo ograniczymy prąd na nitce do 500mA i stracimy połowę mocy czyli w zasadzie jasności. Tak samo z Red 700mA -czyli np. XP-E Red z grupy R2 620-625 nm. Max co mozemy z niej wycisnac to 700mA i wrzucajac je na nitke np. z XP-G 1,2A sfajczymy je. Ale XP-E Photo Red z binu P4 660-665nm będziemy mogli już puścić na 1A. Jak widać czerwona dioda czerwonej nie równa. Dlatego pierwsze co powinniśmy zrobić to dowiedzieć się co kupujemy jeśli chodzi o diody. A kanały - tu już pełna dowolność w zależności co chcemy osiągnąć pamiętając by dobierać diody tak aby max prąd był taki sam lub ewentualnie większy od tego jaki damy na daną nitkę (z uwzglednieniem straty). U siebie zrobiłem na XP-G, XP-E - 6 kanałów - kanal biały, kanał royal blue, kanal blue, kanal green, kanal red i kanal red-orange. Przy czym red-orange jest puszczony tylko na ~500mA ze względu na 2 diody Amber w tej nitce. Dlaczego redy mam na oddzielnych kanalach - aby moc je wylaczyc. Sporo się naczytałem ze ten kolor nie wszystkie korale lubia - wiec celowo zrobilem sterowanie by np. dac niewielka ilosc dla zwyklego wyciagniecia pewnych kolorow ale by nie tracic na "podstawowych" barwach. A tak to wygląda: w - white, rb - royal blue, b - blue, g - green, r - red, ro - red orange, a - amber A tak świeciło podczas uruchamiania - lewa strona jeszcze nie podłączona jesli chodzi o moduły XP-G i XP-E Royal Blue

Pewna i tak nie będziesz, błąd pomiaru 713 to +-0.04 czyli jak pokaże Ci wynik 0,04 to możesz mieć zarówno 0 jak i 0,08 Wysłane z mojego Redmi Note 4 przy użyciu Tapatalka

Nie widać by gdziekolwiek tkanka leciała. Może nie wygląda okazale ale chec do życia na pewno ma ;] Ja bym jej dal więcej nawet czasu jak nie będzie lecieć. Wysłane z mojego Redmi Note 4 przy użyciu Tapatalka

Odstają bo to młode mordki, daj im czas niech podrosną. Powinny wypełnić tą lukę i wyrównać się z tymi większymi tworząc zwartą "strukturę". To LPS więc buduje szkielet, pomysły o odcinaniu główek bez szkieletu odpuść. Jak podrośnie to można ciąć dremelkiem wraz ze szkieletem. Niektórzy tną wycinając główki - inni tną przez środek główki. Miałem szczepki i tak i i takie. Te z połową główki dość szybko regenerowały się - choć w mojej opinii sposób 1 jest lepszy ze względu na mniejsze ryzyko infekcji.

Konrad, w żadnym miejscu nie udowadniam, że się mylisz. Ani Cie nie oceniam. Od tego zacznijmy, może wtedy dyskusja będzie inna. Chcę poszerzyć swoja wiedzę, jak i wiedzę kolegów. Przejrzałem te dwa linki akonto odpowiedzi na pytanie czy wystarczą makroelementy czy nie. No i czytam: Silicate is specifically used for the growth of diatoms which utilize this compound for production of an external shell. Micronutrients consist of various trace metals and the vitamins thiamin (B1), cyanocobalamin (B12) and sometimes biotin. Two enrichment media that have been used extensively and are suitable for the growth of most algae are the Walne medium (Table 2.3.) and the Guillard’s F/2 medium (Table 2.4.). Various specific recipes for algal culture media are described by Vonshak (1986). Commercially available nutrient solutions may reduce preparation labour. The complexity and cost of the above culture media often excludes their use for large-scale culture operations. Alternative enrichment media that are suitable for mass production of micro-algae in large-scale extensive systems contain only the most essential nutrients and are composed of agriculture-grade rather than laboratory-grade fertilizers (Table 2.5.). http://www.fao.org/docrep/003/W3732E/w3732e06.htm#b2-2.3.2. Growth dynamics Stąd też zrodziło się moje pytanie na czacie - czy jest sens na siłę szukać pełnego F/2 czy nie wystarczą podstawowe składniki. Tyle i tylko tyle. Znamienne dla mnie jest ostatnie zółte zdanie i ten zapis: "agriculture-grade rather then laboratory". Dlatego jeszcze raz zadam pytanie. Co się stanie jeśli nie mając pewności co tam w takim Tropicalu Aqua Plant jest (kiedyś nie podawali składu, nie wiem jak teraz) zrobię sobie pożywkę tylko z 75 g NaNO3 + 5 g NaH2PO4.H2O w 1l RO, plus ewentualnie 30g Na2SiO3.9H2O w 1l RO i oleję całe trace elements i witaminy ? Tego w tych artykułach nie znalazłem.