Sagerrak1

Ja bym zrobił: Icp teraz, żeby poznać ewentualne braki Podmiany po 15-20 l na tydzień przez 3 tygodnie conajmniej każda po 35ppt i powoli podnosić do 35ppt. Mogły zużyć mikro, te podmiany były za małe

Wsadzić więcej sps i liczyć, że nie da rady wszystkim. Serio, ta mikra bestia zmienia upodobania co miesiąc. U mnie spsy tylko irytuje, uwziął się na acany - mają być wypompowane i tyle. Był czas, że im odpuścił, to nawet nie wiedziałem, że takie ładne Acany mam Nie zdominował go salarias, błazny ani żółtek. O eksmisji w moim przypadku nie ma mowy, bo łapanka była bezskuteczna miesiącami.

Tak dalej, może nie nazwałbym tego cyklicznym, ale nawracającym co chwila w niewielkiej ilości. Zielone cyjano i mniej czerwonego. Wzmocnienie dawek Microbe lift special blend . Niemniej równolegle usuwałem prawdopodobną przyczynę - 0 NO3 przy 0,04 PO4. Dozowałem NO3. Śmiem zakładać, że bez bakterii byłoby słabiej, bo dodatkowym NO3 nakarmiłbym cyjano... Jednak kto to wie. Zresztą to hobby jest tak złożone, że jak ktoś stwierdzi, że 100% rozwiązaniem problemu był krok X - to jest ignorantem

12h święcenia, poranek słaby i rosnący, 7 szczyt trwa. A Twoich ustawień w żaden sposób nie nazwałbym podobnymi

Płaskie elementy w "normalnej" perspektywie front-view skutkują zasłanianiem widoku kolonii umieszczonych głębiej na talerzu. Porosną Ci te akry i będziesz z góry patrzył tylko. Wygląda fajnie jako suche, później trochę szkoda, może chociaż pochylić te talerze do frontu? P.S. za mały baniak, zmieniaj póki nie dojrzało ;D

Działa, daje całkiem ładny spread, nie ma mocno zacienionych stref nad baniakiem 80*50. 2 lata nie odmawia posłuszeństwa (tfu, na psa urok ) Ustawienia w szczycie: 40% biały 90% niebieski 10% bursztynowy Jednak przez 7h jest cały czas doświetlania belkami LED 2*40W. Z opinii: niebieski kanał jakiś taki błękitny, brak trochę głębokiego granatu, stąd między innymi te belki. Bursztynowy staje się bezużyteczny powyżej 20%. Wszystko się robi czerwone. Potwornie duży zasilacz.

Nagła zmiana KH, złe warunki transportu (temp, pH) szok od światła czy zmiany innych parametrów. Mogła być już w złym stanie a zmiana warunków pomogła jej się zawinąć do końca. Pomógłbym precyzyjniej, ale szklana kula się stłukła.

Teraz jest trend rozszerzania tafli źródeł w lampach LED. Kiedyś kompaktowali w kessile, hydry etc. Orphek zawsze szeroki, nowy radion szeroki. Ktoś to już zauważył i słusznie. Generalnie wydaje mi się że lepiej mieć pierdyliard 1 watowych diod rozproszonych w lampie na szerokość całego akwarium tak jak to jest z lampami T5. Tym bardziej, że przednia szyba mocno odbija światło i rozprasza, dlatego też warto, żeby była oświetlona. Takie rozwiązania jednak mnożą koszty i w ostatecznym rozrachunku wyjdzie, że koszt kilkuletniego utrzymania i zakupu T5 jest taki jak dobrego ledowego źródła...

To nie zmienia moich zeznań, o tym pisałem. Zdjęcie lepsze poprosimy.

Jod, u mnie caulastrea ruszyła po wyprowadzeniu jodu na prostą.

Ja tam nie widzę nic poza odrobiną cyjano na kawałku sflaczałej tkanki capnelli.

Kwestia podejścia. Ja reaktora nie mam, na ATI prowadzę od początku. W moim przypadku, to za skomplikowane było tego nie zrobić i zrobiłem to z lenistwa. Tak to jakieś butelki magnezu, strontu, potasu i inne trzebaby kupować ;).

Panowie, z NaOH jak proponuje Norbert doskonale zgrywa się ATI essentials w 3 butelkach. Nie tylko równowaga jonowa na poziomie Na+ i Cl-, ale i w miarę zbilansowana zawartość pierwiastków jak Sr S K i niektórych mikro. 40g/l NaOH to mniej więcej tyle sodu co w pierwszym ATI, czyli dozując ten roztwór można go uzupełnić o dwie pozostałe butelki ATI minimalizując konieczność zwiększenia suplementacji jaka występuje przy Kalkwasser. Ja osobiście tak podłączyłem rozcieńczając jednak 5* roztwór NaOH dla mniejszych skoków. 100ml/100l na dobę i pH z granic 7,6-7,9 mam 8,1-8,3

U mnie Mithrax żarł wszystkie caularepa włącznie z tą. Salarias wyłapywał co mniejsze.

Dla zdrowia swojego i tego akwarium Piotrze: Przestań mierzyć to NO2 ;). Zaopatrz się w różne bakterie i możesz nawet przesadzać trochę z ich ilością. Lekki zakwit nie powinien zaszkodzić. Te media muszą się dobrze zasiedlić. Nopox dalej, ale obserwuj NO3. Ustawiłeś panel na nowo to skończ grzebać tam.

Jeśli biały "glut " był taki jak u kolegi wyżej po karmieniu - to śluz. Nie wiem jak było u Ciebie. Brązowe natomiast są dosyć częstą reakcją na zwiększenie światła - zrzucają zooksantelle. Jednak te zrzucać mogą też z wielu innych powodów: większy udział heterotrofii, stres oksydacyjny, nieodpowiednia chemia itd.

Hej. W rzeczywistości to jaki ma kolor? Biały, niebieski, szary? Zdradzisz gdzie można taką zdobyć?

Śluz ma zwykle różne zadania. Przy karmieniu euphyllie z użyciem śluzu wciągają pokarmy do mordek. Z moich obserwacji wynika jednak, że te, trzymane pod mocnym światłem pokarm przyjmują niechętnie. U swoich widziałem niejednokrotnie jak śluzu używają właśnie do odrzucenia jedzenia, po prostu razem ze śluzem z euphylli spływał pokarm. W okresie, kiedy NO3 było ok 2, po4 ok 0,03 a trzymane były pod bardzo słabymi ledami - jadły jak najęte. Teraz, kiedy światła mają b.dużo a NO3 0,2 , PO4 0,02 to właśnie tak manifestują niechęć do dokarmiania. Rosną szybko w obu przypadkach Edit: oczywiście śluz nie jest brązowy, tak?

Ten koral, to nie Sympodium?

Ach... Taśmówka... Mmmm sam bym palce podłożył

A tak przy okazji - czym tniecie amelinum ? Te radiatory mają ładne czyste cięcia.

Miałem już z 10 różnych partii AF Reef Salt. Przy 35ppt zawsze wychodzi 1350-1400. Salifertem na solance sprawdzane. Wyniki saliferta świeżego pokrywają się z ICP.

duncanopsammia axifuga

Cech osobniczych dobrze na takim zdjęciu nie uchwyciłeś, ale zakładam, że któraś Echinophyllia ... Może Echinophyllia aspera .

O to to ! o czym pisałem wcześniej. Ja niestety naobiecywałem up'ów, a na własne życzenie narobiłem bigosu z koralowcem. Wysyp alg na kominie gdzie siedział i jeszcze by żył. Niestety podskrobując algi by miał światło musnąłem go, popłynął z prądem i tyle go widziałem.